园艺学报 ›› 2025, Vol. 52 ›› Issue (9): 2425-2438.doi: 10.16420/j.issn.0513-353x.2024-0831
唐嘉怡1,2, 缪绸雨1,2, 尹豪杰1,2, 吴明月1,2, 曹向敏1,2, 张惠敏1,2, 金燕1,2, 卢晓鹏1,2, 朱亦赤1,2, 李大志1,2, 盛玲1,2,*()
收稿日期:
2025-05-21
修回日期:
2025-07-02
出版日期:
2025-09-25
发布日期:
2025-09-24
通讯作者:
基金资助:
TANG Jiayi1,2, MIAO Chouyu1,2, YIN Haojie1,2, WU Mingyue1,2, CAO Xiangmin1,2, ZHANG Huimin1,2, JIN Yan1,2, LU Xiaopeng1,2, ZHU Yichi1,2, LI Dazhi1,2, SHENG Ling1,2,*()
Received:
2025-05-21
Revised:
2025-07-02
Published:
2025-09-25
Online:
2025-09-24
摘要:
为探究草酸处理对采后血橙果实品质和花色苷代谢的影响,以成熟塔罗科血橙(Citrus sinensis L. Osbeck‘Tarocco’)果实为材料,用10 mmol · L-1草酸浸泡处理5 min,测定贮藏期间果皮色泽、果汁色泽、花色苷、有机酸、糖、总黄酮和总酚含量以及发病率和失水率等指标。同时,还对花色苷生物合成通路相关基因和已报道的参与花色苷代谢调控的重要转录因子进行qRT-PCR分析。结果表明,草酸处理抑制了采后血橙果实贮藏期间花色苷的积累,果皮色泽和果汁色泽较淡,花色苷含量较低;果实柠檬酸含量较对照降低,蔗糖含量明显高于对照。此外,草酸处理明显降低了贮藏后期果实的真菌病害发病率和失重率。草酸处理果实中大多数花色苷合成通路基因(PAL4、CHI和ANS)以及调控基因(NAC、CHR4和PH4)与对照相比在贮藏期间表达显著下调。相关性分析表明,转录因子NAC、WRKY40、Ruby1和PH4的表达趋势与花色苷含量变化趋势显著正相关。研究结果表明草酸处理可对血橙果实采后花色苷的积累产生抑制作用,该抑制作用与花色苷生物合成及调控基因的表达受抑制相关。
唐嘉怡, 缪绸雨, 尹豪杰, 吴明月, 曹向敏, 张惠敏, 金燕, 卢晓鹏, 朱亦赤, 李大志, 盛玲. 外源草酸对采后血橙果实品质和花色苷代谢的影响[J]. 园艺学报, 2025, 52(9): 2425-2438.
TANG Jiayi, MIAO Chouyu, YIN Haojie, WU Mingyue, CAO Xiangmin, ZHANG Huimin, JIN Yan, LU Xiaopeng, ZHU Yichi, LI Dazhi, SHENG Ling. The Effect of Exogenous Oxalic Acid Treatment on the Fruit Quality and Anthocyanin Metabolism of Postharvest Blood Orange Fruit[J]. Acta Horticulturae Sinica, 2025, 52(9): 2425-2438.
引物名称 Primer name | 正向引物(5′-3′) Forward primer | 反向引物(5′-3′) Reverse primer |
---|---|---|
CsActin | CCAAGCAGCATGAAGATCAA | ATCTGCTGGAAGGTGCTGAG |
Cs_ont_8g005310 | GTCGTTGAATGCTGCTGAGG | ACGCAAGTCCCTCTTTAGGC |
Cs_ont_6g020620 | TCTCAGGGAATGGAATGGCG | GTACCATTTAGTCACATCGGCA |
Cs_ont_9g012610 | TCAAGCGCATGTGTGACAA | GCCATGTACGCACACACATT |
Cs_ont_2g025700 | AGTTCAAGCGCATGTGTGAC | GCACTTCGACCACCACAATG |
Cs_ont_7g003040 | GATGCTCTTGTCTCTGCTCCA | GTCCCTCACCGCACTTTCTA |
Cs_ont_1g027890 | TGGGAGGCACCTTTAAGCTC | TAAGAGAGGCCAGGGGTTCA |
Cs_ont_2g002950 | TCGAATGGAGGAACCCATCAC | CCATGGTTCACCAACTGAAAGA |
Cs_ont_5g038970 | CACGTTCGCCAGGAAGAGAT | CAACGCACAAGTTCAACCGT |
Cs_ont_3g003380 | TCAATGTGCCCACAGAGTTCG | TGGCTCTGCAAGTATCCACAG |
Cs_ont_5g040910 | CTCCAAGCGACTATACAGAGG | AAGCCAAGTGACAACACTGC |
Cs_ont_6g006980 | CTTCTTCGACAGCCGTTTGG | GTTTGGCCCTTGGTTTGCAT |
Cs_ont_2g004470 | GTTTCAGGATCAGGCGGGAA | TTTTCTGGTGCCTGTGGTGT |
Cs_ont_2g009870 | ATCTGCGACGGCTACAGATG | AGGCGAAAGCTCAGCAAGAT |
Cs_ont_2g009920 | AAGGGCTGGGACAACTGAAC | TGCAACTGAGAGGGTCCAAC |
Cs_ont_2g035300 | AACGTCATACCTCTGCTGGC | AAGCGTTCGGTGAATACCCA |
Cs_ont_4g001580 | GGATTCAACGTGGGTGGACA | TCAGCTTCTTGTTCTCAGTGCT |
Cs_ont_4g010710 | AACTATGTGGAAGGCCGCTC | ATCGGTGACTTTGAAGCCGT |
Cs_ont_5g010100 | TTCACCCACCAAAACCAGCT | CTCTTCTCCTTGGTTGGCGT |
Cs_ont_6g003620 | CCAGCTGTGTCAAGCAGAGA | AACAATGCCGCATGCCATTT |
Cs_ont_6g005110 | AAGCAGCTGTTCTGTAGGCT | CTGTGGTGCAACCGATGATT |
Cs_ont_6g020160 | TGCATTTGCCCATCGAGAGT | TTCTGTCGGGGTTTGACGAG |
表1 实时荧光定量分析引物
Table 1 Primers used for qRT-PCR analysis
引物名称 Primer name | 正向引物(5′-3′) Forward primer | 反向引物(5′-3′) Reverse primer |
---|---|---|
CsActin | CCAAGCAGCATGAAGATCAA | ATCTGCTGGAAGGTGCTGAG |
Cs_ont_8g005310 | GTCGTTGAATGCTGCTGAGG | ACGCAAGTCCCTCTTTAGGC |
Cs_ont_6g020620 | TCTCAGGGAATGGAATGGCG | GTACCATTTAGTCACATCGGCA |
Cs_ont_9g012610 | TCAAGCGCATGTGTGACAA | GCCATGTACGCACACACATT |
Cs_ont_2g025700 | AGTTCAAGCGCATGTGTGAC | GCACTTCGACCACCACAATG |
Cs_ont_7g003040 | GATGCTCTTGTCTCTGCTCCA | GTCCCTCACCGCACTTTCTA |
Cs_ont_1g027890 | TGGGAGGCACCTTTAAGCTC | TAAGAGAGGCCAGGGGTTCA |
Cs_ont_2g002950 | TCGAATGGAGGAACCCATCAC | CCATGGTTCACCAACTGAAAGA |
Cs_ont_5g038970 | CACGTTCGCCAGGAAGAGAT | CAACGCACAAGTTCAACCGT |
Cs_ont_3g003380 | TCAATGTGCCCACAGAGTTCG | TGGCTCTGCAAGTATCCACAG |
Cs_ont_5g040910 | CTCCAAGCGACTATACAGAGG | AAGCCAAGTGACAACACTGC |
Cs_ont_6g006980 | CTTCTTCGACAGCCGTTTGG | GTTTGGCCCTTGGTTTGCAT |
Cs_ont_2g004470 | GTTTCAGGATCAGGCGGGAA | TTTTCTGGTGCCTGTGGTGT |
Cs_ont_2g009870 | ATCTGCGACGGCTACAGATG | AGGCGAAAGCTCAGCAAGAT |
Cs_ont_2g009920 | AAGGGCTGGGACAACTGAAC | TGCAACTGAGAGGGTCCAAC |
Cs_ont_2g035300 | AACGTCATACCTCTGCTGGC | AAGCGTTCGGTGAATACCCA |
Cs_ont_4g001580 | GGATTCAACGTGGGTGGACA | TCAGCTTCTTGTTCTCAGTGCT |
Cs_ont_4g010710 | AACTATGTGGAAGGCCGCTC | ATCGGTGACTTTGAAGCCGT |
Cs_ont_5g010100 | TTCACCCACCAAAACCAGCT | CTCTTCTCCTTGGTTGGCGT |
Cs_ont_6g003620 | CCAGCTGTGTCAAGCAGAGA | AACAATGCCGCATGCCATTT |
Cs_ont_6g005110 | AAGCAGCTGTTCTGTAGGCT | CTGTGGTGCAACCGATGATT |
Cs_ont_6g020160 | TGCATTTGCCCATCGAGAGT | TTCTGTCGGGGTTTGACGAG |
图1 草酸处理对血橙果汁和果皮表型(A)、色差指数CI(B、C)、花色苷含量(D)的影响 * 表示在相同时期草酸与对照在P < 0.05水平的显著性差异,t-test. 下同
Fig. 1 Effects of oxalic acid treatment on the phenotype of juice and peel(A),color difference index CI(B,C)and anthocyanin content(D)of blood oranges * represent significant differences at P < 0.05 between OA and the control at each stage,t-test. The same below
图3 草酸处理对血橙果实贮藏期间总黄酮(A)和总酚含量(B)的影响
Fig. 3 Effects of OA treatment on total flavonoid content(A)and total phenol content(B)in blood orange fruit during postharvest storage period
图5 草酸处理对血橙果实贮藏期花色苷生物合成相关基因表达的影响
Fig. 5 Effects of OA treatment on expression of genes related to anthocyanin biosynthesis of blood orange fruits during postharvest storage period
图6 草酸处理对血橙果实贮藏期花色苷生物合成调控相关转录因子基因表达的影响
Fig. 6 Effect of OA treatment on the expression of transcription factor genes regulating anthocyanin biosynthesis in blood orange fruits during storage period
元数据ID Mata_ID | 基因ID Gene_ID | 相关系数 Cor | P值 P value |
---|---|---|---|
花色苷Anthocyanin | FAR1(Cs_ont_2g009920) | 0.402869 | 0.219257 |
花色苷Anthocyanin | HAC12(Cs_ont_6g003620) | 0.453251 | 0.161490 |
花色苷Anthocyanin | PH4(Cs_ont_2g035300) | 0.698900 | 0.016715 |
花色苷Anthocyanin | ATC3H64(Cs_ont_4g010710) | 0.346240 | 0.296919 |
花色苷Anthocyanin | CHR4(Cs_ont_2g009870) | 0.153589 | 0.652082 |
花色苷Anthocyanin | NAC(Cs_ont_2g004470) | 0.882306 | 0.000324 |
花色苷Anthocyanin | CH-ZF(Cs_ont_6g020160) | 0.340465 | 0.305587 |
花色苷Anthocyanin | WRKY40(Cs_ont_4g001580) | 0.664538 | 0.025710 |
花色苷Anthocyanin | AN1(Cs_ont_5g010100) | 0.011326 | 0.973634 |
花色苷Anthocyanin | Ruby1(Cs_ont_6g005110) | 0.823061 | 0.001857 |
表2 10个转录因子表达水平与花色苷含量的相关性
Table 2 Correlation analysis between anthocyanin content and ten transcription factors
元数据ID Mata_ID | 基因ID Gene_ID | 相关系数 Cor | P值 P value |
---|---|---|---|
花色苷Anthocyanin | FAR1(Cs_ont_2g009920) | 0.402869 | 0.219257 |
花色苷Anthocyanin | HAC12(Cs_ont_6g003620) | 0.453251 | 0.161490 |
花色苷Anthocyanin | PH4(Cs_ont_2g035300) | 0.698900 | 0.016715 |
花色苷Anthocyanin | ATC3H64(Cs_ont_4g010710) | 0.346240 | 0.296919 |
花色苷Anthocyanin | CHR4(Cs_ont_2g009870) | 0.153589 | 0.652082 |
花色苷Anthocyanin | NAC(Cs_ont_2g004470) | 0.882306 | 0.000324 |
花色苷Anthocyanin | CH-ZF(Cs_ont_6g020160) | 0.340465 | 0.305587 |
花色苷Anthocyanin | WRKY40(Cs_ont_4g001580) | 0.664538 | 0.025710 |
花色苷Anthocyanin | AN1(Cs_ont_5g010100) | 0.011326 | 0.973634 |
花色苷Anthocyanin | Ruby1(Cs_ont_6g005110) | 0.823061 | 0.001857 |
图7 与花色苷含量显著相关的转录因子和花色苷合成通路基因的相关网络示意图
Fig. 7 Correlation network diagram among anthocyanin content,transcription factor expression,and anthocyanin biosynthesis pathway gene expression
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